?轉染時用的含血清的培養基是什么

轉染時用的含血清的培養基是什么

    在細胞轉染實驗中，“轉染時用的含血清的培養基是什么"是很多新手容易混淆的問題。有人說是Opti-MEM，有人說是DMEM培養基，還有人說是轉染專用減血清培養基——這些說法其實都不算錯，但分別對應轉染流程中不同的階段和用途。

    轉染時用的含血清的培養基，實際上指向轉染實驗中三種不同功能、不同血清含量的培養基：制備復合物階段的無血清或減血清培養基（如Opti-MEM、DMEM基礎培養基），轉染過程中的含血清培養基（如DMEM+5-10%FBS），以及轉染后更換的含血清培養基（培養基）。三者各司其職，用錯了階段，轉染效率可能大打折扣。

    血清中含有大量的蛋白質，在轉染過程中，帶負電的蛋白質可能干擾陽離子脂質體對核酸的吸附，影響轉染效率。理解轉染時用的含血清的培養基是什么，本質上就是在理解血清在不同階段對轉染效率的差異化影響，以及如何通過合理選擇培養基來平衡“轉染效率"與“細胞存活率"這對矛盾。

一、先看核心結論：三個階段，三種培養基

    在深入展開各類培養基的技術細節之前，先用一個框架來回答轉染時用的含血清的培養基是什么：轉染實驗全流程涉及三種不同功能的培養基——復合物制備階段用無血清或減血清培養基（保護復合物形成），轉染階段可用含血清培養基（維持細胞狀態），轉染后更換含血清培養基（促進細胞恢復和表達）。

    血清對轉染的影響：它會干擾DNA-脂質體復合物的形成、降低轉染效率，但同時又能為細胞提供營養因子、減少轉染引起的細胞死亡。因此，轉染實驗的策略從來不是“一刀切"地加或不加血清，而是在不同階段有選擇地控制血清的參與程度。

    轉染用的培養液可以含血清也可以不加，如加血清則應在DNA-陽離子脂質體復合物形成后加入。接下來逐一拆解三個階段的培養基選擇邏輯。

    階段一：復合物制備——為什么不能含血清？

    轉染時用的含血清的培養基是什么？在復合物制備階段，答案是明確的：這個階段不能使用含血清的培養基。

    DNA-陽離子脂質體復合物形成時不能含血清，因為血清會影響復合物的形成。血清中的蛋白質（尤其是帶負電的蛋白質）可能干擾陽離子脂質體等轉染試劑與核酸的結合，影響復合物的形成，從而降低轉染效率。對于傳統的脂質體轉染試劑，血清的存在可能導致轉染復合物不穩定，甚至引發細胞毒性。

    無血清的高糖DMEM培養基是稀釋液，不能使用含血清的培養基進行DNA和轉染試劑的稀釋，因為轉染復合物的形成過程不能含有血清。

    這一階段常用什么培養基？

    這個階段常用培養基是Opti-MEMI減血清培養基或無血清DMEM。Opti-MEM是一種改良型減血清培養基，本質上是MEM的改良版本，它和陽離子脂質體轉染試劑搭配使用時，能顯著提高轉染效率，原因是低血清環境減少了血清對轉染試劑的干擾，使外源基因更容易進入細胞。此外，轉染專用減血清培養基（如Modi-MEM）內含胰島素、轉鐵蛋白、次黃嘌呤、胸苷和微量元素，這些附加組分可使血清添加量減少至少50%，而細胞生長速率或形態不發生變化。

    如果手頭沒有專用的減血清培養基，也可以使用常規的無血清DMEM或無血清1640作為稀釋液。

    抗生素同樣需要注意。在轉染復合物制備階段，不僅要避免血清，還應避免抗生素。由于陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性，使得對真核細胞無毒的抗生素進入細胞，從而降低細胞活性，導致轉染效率降低。因此，轉染復合物制備時建議使用不含雙抗的培養基。

    階段二：轉染過程——血清可以加，但有條件

    轉染時用的含血清的培養基是什么？當復合物已經形成、加入到細胞培養體系中之后，培養基的血清要求就發生了變化。

    轉染可以使用血清，前提是DNA-陽離子脂質體復合物形成時不含血清。轉染用的培養液可以含血清也可以不加，如加血清則應在DNA-陽離子脂質體復合物形成后加入。也就是說，復合物形成后再加血清是可行的，關鍵在于復合物形成的那段時間不能有血清干擾。

    目前市面上的轉染試劑，普遍能在血清存在下不受干擾遞送核酸，因此無需在轉染過程中去除血清，建議轉染時使用含血清培養基，尤其是比較脆弱的細胞類型。

    在轉染前1小時，可換用37℃預熱過的不含雙抗的培養基，通常含FBS5%，此處血清不影響轉染效率。采用含血清的全培養基有助于提升轉染效率，培養基中也可加入抗生素。

    為什么有血清反而有助于轉染？

    血清能提供營養因子，幫助細胞在轉染過程中維持健康狀態，減少因轉染引起的細胞應激和死亡。對于對血清缺乏比較敏感的細胞，無血清條件可能導致細胞狀態惡化，影響實驗結果。

    因此，對于大部分常規細胞系（如293T、HeLa等），轉染過程中使用含5-10%血清的培養基是一個兼顧轉染效率和細胞存活率的選擇。

    階段三：轉染后——為什么最好換為含血清培養基？

    轉染時用的含血清的培養基是什么？轉染完成后，培養基的處理同樣影響最終效果。

    轉染后在6小時左右最好換液且換為有血清的培養基，其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大，其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。使用脂質體等轉染試劑時，轉染前換無血清培養基，轉染后4-6小時再更換成有血清培養基，這其實是為了減輕轉染造成的細胞毒性。

    加入血清的時機也需要注意：加入過早會引起未轉染細胞的優勢生長，過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察，當約1/5的細胞變圓的時候加入血清。

    不同轉染試劑的操作差異。部分新型轉染試劑（如Entranster）采用有血清轉染，不用在有血清和無血清之間更換，整個轉染過程可以在含血清且含抗生素的培養基中操作，無需更換培養基。因此，具體是否需要換液、何時換液，建議以所用轉染試劑的說明書為準。

二、三種培養基橫向對比：成分、用途與時機

    以下快速對比幫助理解轉染各階段培養基的差異：

    復合物制備階段：常用Opti-MEM、無血清DMEM，血清含量為0%，用于稀釋DNA和轉染試劑、形成復合物。血清會干擾復合物形成，必須無血清，同時避免抗生素。此階段是轉染效率的關鍵控制點。

    轉染過程：常用DMEM培養基，血清含量為5-10%，用于維持細胞在轉染過程中的健康狀態。復合物形成后再加入，血清不影響轉染，但能減少細胞死亡。

    轉染后更換：常用DMEM培養基，血清含量為5-10%，用于促進細胞恢復、降低脂質體毒性。轉染后4-6小時更換，過早或過晚都會影響結果。

    不同細胞的差異化策略：沒有“一刀切"的答案

    不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同的。例如HeLa、293、CHO、COS7、MCF-7、HepG2等細胞，是否加血清對不同細胞有不同影響，有些細胞可以有血清，有些加血清就會受影響。

    HeLa、293T等常規細胞系在無血清條件下轉染效率較高，轉染過程中換為含血清培養基有助于維持細胞存活。原代細胞、干細胞等對血清缺乏敏感的細胞，建議選擇兼容血清的轉染試劑，或全程使用含血清條件。對于新細胞系，建議測試含血清與無血清條件下的轉染效率，選擇合適的方案。

    轉染時用的含血清的培養基是什么——一個完整的操作實例

    以脂質體轉染293T細胞為例，以下流程可幫助理解轉染時用的含血清的培養基是什么的實際應用：

    鋪板階段：用含10%FBS的DMEM培養基鋪板，使細胞在轉染當天達到70-90%融合度。此階段不需要無血清條件。

    復合物制備：將DNA和脂質體轉染試劑分別用無血清DMEM或Opti-MEM稀釋，室溫靜置5-15分鐘形成復合物。此階段絕對不能用含血清培養基。

    復合物加入細胞：將復合物加入細胞培養板中，輕輕混勻。此時培養基中是否含血清取決于實驗設計——可在復合物形成后加入血清，也可全程使用無血清條件。

    轉染后換液：轉染后4-6小時，更換為含5-10%FBS的培養基，去除未進入細胞的脂質體復合物，減輕細胞毒性。

    表達檢測：繼續培養24-48小時后檢測轉染效率或目標蛋白表達。

總結

    轉染時用的含血清的培養基是什么？歸納起來就是“階段不同、血清含量不同"的三步判斷邏輯。

    復合物制備階段——用無血清或減血清培養基（Opti-MEM、無血清DMEM），血清含量0%，避免血清蛋白干擾復合物形成。轉染過程——復合物形成后，可用含5-10%FBS的培養基，血清不影響已形成的復合物，反而有助于維持細胞狀態。轉染后換液——轉染后4-6小時更換為含血清培養基，減輕脂質體毒性、降低細胞死亡率。

    血清在轉染實驗中是把：它在復合物形成階段是“干擾源"，在細胞存活階段是“保護傘"。理解轉染時用的含血清的培養基是什么，本質上就是理解如何在不同階段合理控制血清的參與程度——該禁的時候禁（復合物形成），該用的時候用（轉染過程和后培養）。

    下次做轉染時，不妨先明確手上的轉染試劑屬于哪一類（脂質體還是新型兼容血清試劑），再根據細胞類型和試劑說明書中對血清的要求，合理選擇各階段的培養基類型和血清濃度。轉染效率的高低，往往就藏在這些培養基選擇的細節里。

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